En corto: Cada solvente y cada técnica sacan de la planta cosas distintas, en cantidades distintas. En un estudio con mezclas de agua, etanol y acetona, la composición del solvente cambió de forma significativa lo que se recuperó de inflorescencias y hojas, y la mezcla rica en acetona dio más cannabinoides totales.
Lo esencial
- El solvente cambia qué compuestos y cuánto se recuperan de inflorescencias y hojas [1].
- CO₂ supercrítico concentra más cannabinoides por extracto, pero el ultrasonido con metanol recupera más de la planta [2].
- El calor convierte parcialmente ácidos en neutros; el THCA-A pierde CO₂ más rápido que CBDA y CBGA [4].
- Los solventes residuales se analizan por cromatografía de gases con espacio de cabeza y pueden aparecer en el COA [6].
En este artículo
- La explicación
- El solvente decide qué compuestos entran al extracto
- Etanol, acetona y CO₂ no entregan el mismo resultado
- El calor convierte ácidos en neutros y altera el perfil
- El solvente puede aparecer como residuo en el certificado
La explicación
Cada solvente y cada técnica sacan de la planta cosas distintas, en cantidades distintas. En un estudio con mezclas de agua, etanol y acetona, la composición del solvente cambió de forma significativa lo que se recuperó de inflorescencias y hojas, y la mezcla rica en acetona dio más cannabinoides totales. En otro, el CO₂ supercrítico dio un extracto más concentrado en cannabinoides, pero el ultrasonido con metanol recuperó más de la planta; y en cáñamo, la maceración con etanol a temperatura ambiente fue la técnica más adecuada entre cuatro. Para ver esas diferencias, los perfiles se comparan por HPLC con detectores de arreglo de diodos y de masas. El solvente también puede dejar rastro: los de fabricación pueden quedar como residuos, por eso un COA de extracto puede traer el panel de solventes residuales.
El solvente decide qué compuestos entran al extracto
La extracción no copia la planta completa: cada solvente disuelve compuestos con afinidad química distinta. Un estudio con mezclas de agua, acetona y etanol encontró que la composición del solvente afectó de forma significativa la eficiencia en inflorescencias y hojas [1]. Un certificado de análisis reporta lo que ese solvente pudo recuperar.
En inflorescencias, el contenido fenólico total más alto (16.05 mg GAE por g de peso seco) salió con 1/6 agua, 1/6 etanol y 2/3 acetona; en hojas, 13.65 mg GAE/g con 1/3 etanol y 2/3 acetona [1]. Los autores concluyen que hay selectividad clara según parte de la planta y solvente [1].
El análisis por HPLC-DAD/ESI-MS2 identificó 32 compuestos: ácidos fenólicos, flavonoides, amidas de ácidos hidroxicinámicos, lignanamidas y derivados de cannabinoides; su contenido cambió según solvente y parte de la planta [1]. La mezcla rica en acetona dio el mayor contenido de cannabinoides totales: 10.56 mg en inflorescencias y 8.45 mg en hojas, equivalentes de CBN por g de peso seco [1].
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Etanol, acetona y CO₂ no entregan el mismo resultado
Al comparar CO₂ supercrítico con ultrasonido asistido por metanol en inflorescencias de Kompolti, el extracto de CO₂ salió más concentrado en cannabinoides: 446.29 mg por g de extracto seco frente a 379.85 mg [2]. El ultrasonido recuperó más de la planta: 83.42 mg por g de material vegetal frente a 68.84 mg [2].
El CO₂ usó etanol como cosolvente, a baja presión (<100 bar) y temperatura (<45 °C) [2]. En otra comparación con cuatro técnicas sobre cáñamo, la maceración dinámica con etanol durante 45 minutos a temperatura ambiente resultó la más adecuada para extraer cannabinoides [3].
Para ver esas diferencias, el estudio con CO₂ y ultrasonido separó más de 30 compuestos en 25 minutos por HPLC-MS; identificó 13 cannabinoides y cuantificó 8, con CBD y su precursor ácido como los más abundantes [2]. La comparación de cuatro técnicas usó HPLC de fase inversa con DAD y ESI-MS validado [3].
El calor convierte ácidos en neutros y altera el perfil
La extracción puede incluir calor, y el calor cambia la forma química de algunos cannabinoides. En el estudio de CO₂ y ultrasonido, los autores observaron decarboxilación parcial durante el proceso [2]. La decarboxilación ocurre cuando compuestos ácidos pierden CO₂ por calor.
Los neutros como Δ9-THC, CBD y CBG no están en concentraciones significativas en la planta: se forman por decarboxilación de sus ácidos, que predominan [4]. El estudio examinó la decarboxilación a 80, 95, 110, 130 y 145 °C durante hasta 60 minutos en horno al vacío [4].
La concentración cambió exponencialmente con el tiempo, como reacción de primer orden o pseudo primer orden [4]. Las constantes del THCA-A fueron el doble que las del CBDA y CBGA; el THCA-A se convirtió sin subproductos, mientras CBDA y CBGA fueron menos directos [4]. Para estudiar esto se necesitan métodos que detecten ácidos y neutros al mismo tiempo [4].
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El solvente puede aparecer como residuo en el certificado
Los solventes orgánicos se usan en la fabricación de productos herbales y pueden detectarse como residuos en el producto final [5]. Por eso un certificado de extracto puede incluir un panel de solventes residuales además de cannabinoides. Ese panel describe qué quedó del proceso.
En 279 muestras de productos a base de cannabis, los solventes residuales se clasificaron según USP <467> [5]. Se analizaron por duplicado con cromatografía de gases con espacio de cabeza de evaporación total acoplada a espectrometría de masas [5]. En un COA, este panel usa gas con espacio de cabeza, no HPLC.
La revisión agrupa contaminantes de cannabis en metales pesados, pesticidas, micotoxinas y solventes residuales [6]. Para solventes residuales, la técnica típica es cromatografía de gases con espacio de cabeza, con FID o espectrometría de masas; la preparación de muestra se adapta a la matriz y con frecuencia usa QuEChERS [6].
Preguntas frecuentes
¿Qué solvente extrae más cannabinoides del cáñamo?
Depende de la métrica. Con CO₂ supercrítico el extracto salió más concentrado: 446.29 mg/g de extracto seco; el ultrasonido con metanol recuperó más de la planta: 83.42 mg/g de material vegetal [2]. En cáñamo, entre cuatro técnicas, la maceración con etanol a temperatura ambiente fue la más adecuada [3].
¿Por qué cambia el perfil si uso etanol en lugar de acetona?
La polaridad de cada solvente es distinta y disuelve compuestos diferentes. En inflorescencias, la mezcla 1/6 agua, 1/6 etanol y 2/3 acetona dio 16.05 mg GAE/g de fenólicos totales; en hojas, 1/3 etanol y 2/3 acetona dio 13.65 mg GAE/g [1]. El análisis HPLC-DAD/ESI-MS2 mostró que el contenido de 32 compuestos cambió según solvente y parte de la planta [1].
¿Qué es el panel de solventes residuales en un certificado?
Es la sección donde se reportan restos de solventes de extracción que pueden quedar en el producto final. Los solventes orgánicos usados en fabricación pueden detectarse como residuos [5]. Se clasifican según USP <467> y se analizan típicamente por cromatografía de gases con espacio de cabeza [5][6].
¿La decarboxilación se refleja en los resultados del extracto?
Sí, cuando el proceso incluye calor puede haber decarboxilación parcial [2]. Los ácidos predominan en la planta y los neutros se forman al perder CO₂ [4]. El THCA-A se convierte más rápido que el CBDA y el CBGA [4]. Un COA con método que detecta ácidos y neutros al mismo tiempo permite ver esa proporción [4].
Términos clave
- Extracción por etanol: Extracción en frío o caliente con alcohol.
- Extracción por CO₂ supercrítico: Método premium de extracción sin solventes, usando CO₂ presurizado en fase supercrítica.
- Solventes residuales: Restos de solventes de extracción que deben eliminarse.
- Decarboxilación: Proceso donde compuestos ácidos pierden CO₂ por calor.
- Matriz: Medio en el que está el compuesto.
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- ¿Por qué el solvente cambia el perfil de un extracto de cáñamo?
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Referencias
- El Maabiche O., Benkirane C., El Ati R., Haddad Y., Fauconnier M.L., Allai L., Mansouri F. (2026) — Effect of solvent polarity on phenolic antioxidant extraction from Cannabis sativa L. leaves and inflorescences: mixture design optimization and HPLC-DAD/ESI-MS(2) profiling, RSC Adv 16(44):55353-55372 (doi 10.1039/d6ra05874d) — cómo la composición del solvente (mezclas de agua, etanol y acetona) cambia lo que se extrae de inflorescencias y hojas de Cannabis sativa, comparado por HPLC-DAD/ESI-MS2
- Ioannidis V.A., Sygouni V., Giannopoulos S., Sotirianos K., Ioannides T., Paraskeva C.A., Lamari F.N. (2025) — Development of a Validated LC-MS Method for the Determination of Cannabinoids and Evaluation of Supercritical CO2 vs. Ultrasound-Assisted Extraction in Cannabis sativa L. (Kompolti cv.), Antioxidants (Basel) 14(7):777 (doi 10.3390/antiox14070777) — los métodos de extracción difieren en lo que recuperan de la planta, así que los extractos varían en su composición: CO2 supercrítico contra ultrasonido con metanol, medido por LC-MS
- Brighenti V., Pellati F., Steinbach M., Maran D., Benvenuti S. (2017) — Development of a new extraction technique and HPLC method for the analysis of non-psychoactive cannabinoids in fibre-type Cannabis sativa L. (hemp), J Pharm Biomed Anal 143:228-236 (doi 10.1016/j.jpba.2017.05.049) — comparación de técnicas de extracción de cannabinoides en inflorescencias de cáñamo (maceración dinámica, ultrasonido, microondas y fluido supercrítico) y su análisis por HPLC
- Wang M. et al. (2016) — Decarboxylation Study of Acidic Cannabinoids, Cannabis and Cannabinoid Research — cómo los cannabinoides ácidos (THCA, CBDA) pierden su grupo carboxilo con el calor
- Viviers H.J., Petzer A., Gordon R. (2022) — An assessment of solvent residue contaminants related to cannabis-based products in the South African market, J Cannabis Res 4(1):19 (doi 10.1186/s42238-022-00130-3) — los solventes orgánicos de fabricación pueden quedar como residuos detectables en el producto final; se clasifican según la USP <467> y se miden por headspace GC-MS
- Rosas Pinto D.V., Li H., Sun M. (2026) — Cannabis Products and Contaminant Detection: Critical Review of Regulatory Oversight and Analytical Methodologies, Cannabis and Cannabinoid Research (doi 10.1177/25785125261439008) — qué contaminantes se analizan en productos de cannabis (metales pesados, pesticidas, micotoxinas y solventes residuales) y con qué técnica se mide cada uno
Escrito por Ara, la asistente de IA de EXTRACTOS EUM®, con datos aprobados y certificados de análisis reales. Fuentes: El Maabiche et al. 2026 (elmaabiche2026), Ioannidis et al. 2025 (ioannidis2025), Brighenti et al. 2017 (brighenti2017), Wang et al. 2016 (wang2016), Viviers et al. 2022 (viviers2022) y Rosas Pinto et al. 2026 (rosaspinto2026) — catálogo `referencias` de web.json · Glosario EUM. Revisado por: Equipo técnico de EXTRACTOS EUM® · 23 de octubre de 2026.
